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Qu'est-ce que la pourriture du pied de l'aster: Traiter les asters atteints de la pourriture du pied

Qu'est-ce que la pourriture du pied de l'aster: Traiter les asters atteints de la pourriture du pied


Par: Mary H. Dyer, rédactrice de jardin accréditée

Qu'est-ce que la pourriture des pieds de l'aster? Cette méchante maladie fongique transmise par le sol pénètre dans les asters par la racine pivotante et se propage à travers les racines avant de remonter à travers toute la plante. Une fois établi, le traitement du pied d'aster est difficile; cependant, la maladie peut être évitée. Apprenons-en plus sur les maîtres atteints de pourriture des pieds.

Symptômes de la pourriture du pied d'aster

Qu'est-ce qui cause la pourriture du pied d'aster? La pourriture des pieds par l'aster est le plus courant des conditions météorologiques humides. La maladie est favorisée par un sol mal drainé et un arrosage excessif.Une fois que la patte de l'aster est dans le sol, elle se propage rapidement, même dans de très petites quantités d'eau.

Les symptômes des asters avec pourriture des pieds comprennent un flétrissement soudain des feuilles et une décoloration brun-noir de la partie inférieure des tiges.Les plantes se ratatinent et s'effondrent souvent au niveau du sol. Parce que la maladie affecte les racines, les asters atteints de pourriture des pieds sont facilement arrachés du sol.

Traiter la pourriture des pieds d'aster

La prévention des asters avec pourriture des pieds est la clé de son traitement, car les plantes infectées ne peuvent généralement pas être sauvées.

Plantez des variétés résistantes aux maladies, qui sont moins susceptibles de développer la pourriture de l'aster. Plantez les asters dans un sol bien drainé. Ne jamais planter là où le sol reste détrempé pendant l'hiver et éviter de planter des asters trop profondément. Ne plantez jamais des asters dans le sol qui a déjà été affecté par la pourriture des pieds de l'aster.

Ne plantez pas les asters trop tôt dans la saison lorsque le temps est plus susceptible d'être frais et humide. Attendez le milieu à la fin du printemps. De plus, laissez entre 30 et 90 cm (1 à 3 pieds) entre les plantes. Coupez les feuilles qui touchent le sol.

Les asters préfèrent un emplacement en plein soleil ou en plein soleil. (La lumière du soleil chaude l'après-midi peut être trop intense dans les climats plus chauds).

N'arrosez jamais les asters plus que nécessaire - ne fournissez que suffisamment d'humidité pour garder les plantes en bonne santé. Ne jamais trop arroser ni irriguer jusqu'au point de ruissellement.

Si vous avez découvert des plantes affectées dans votre jardin, retirez-les rapidement. Brûlez les plantes ou détruisez-les soigneusement dans des contenants scellés.Ne mettez jamais de matière végétale malade dans du compost.

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Quelles sont les causes de la pourriture du pied de l'aster - Comment contrôler la maladie de la pourriture du pied de l'aster - Jardin

Résumé de l'article:

Maladies et ravageurs des cultures de fleurs
Auteurs: Poonam Kumari, Thaneshwari et Sapna Panwar
Division de la floriculture et de l'aménagement paysager
ICAR- IARI Nouveau Delhi- 110012
Adresse de correspondance: [email protected]

INTRODUCTION

  1. Les cultures de fleurs sont attaquées par plusieurs ravageurs et maladies.
  1. Plusieurs ravageurs agissent comme vecteurs de diverses maladies qui entraînent une perte de rendement considérable.
  1. Le contrôle chimique est coûteux, le temps passe et est dangereux pour la santé.
  1. La résistance génétique est la méthode la moins chère et la meilleure pour minimiser ces pertes.
  1. Les variétés résistantes sont développées grâce à l'utilisation de parents donneurs résistants disponibles dans le pool génétique.
  1. De nombreuses cultures auraient perdu leur statut commercial si la résistance aux maladies particulières n'était pas disponible. Dans un premier temps, pour obtenir des variétés résistantes, la connaissance de la génétique en ce qui concerne les ravageurs et les maladies est essentielle pour les ravageurs et les maladies,
  • Résistance oligogénique
  • Résistance polygénique
  • Résistance cytoplasmique
Relation des plantes avec les ravageurs et les maladies

  • La relation entre une plante et un phytopathogène est très complexe
  • La capacité d'un phytoravageur ou d'un pathogène à provoquer une maladie chez une plante dépend des conditions environnementales, des propriétés de l'organisme lui-même et de la capacité de la plante à se défendre.
  • Les variétés au sein d'une espèce végétale peuvent différer dans leur capacité à se défendre
  • Dans des conditions climatiques différentes, l'interaction entre la même plante et le même phytopathogène peut avoir des épidémies différentes
  • On sait que les agents pathogènes des plantes se développent et forment de nouvelles races ou souches qui peuvent causer des dommages aux plantes qui ne sont pas affectées par la forme originale de l'agent pathogène.
La résistance est la capacité d'une plante à restreindre la croissance et le développement d'un organisme nuisible ou pathogène spécifié ou les dommages qu'ils causent par rapport aux variétés végétales sensibles dans des conditions environnementales et une pression de ravageur ou pathogène similaires (ISF, 2010)

Variétés résistantes

Une variété est connue pour être résistante, si le ravageur ne peut pas la manger, ou ne peut pas y vivre ou se multiplier. Ainsi, si une plante résiste à un ravageur, elle ne subira aucun dommage de ce ravageur.

AVANTAGES DES VARIÉTÉS RÉSISTANTES

  • Les variétés résistantes offrent les moyens les moins chers de lutter contre les maladies car elles n'impliquent aucune dépense récurrente pour l'agriculteur
  • Les variétés résistantes évitent l'utilisation de pesticides, réduisant ainsi la production végétale, la pollution de l'environnement et les risques pour la santé
  • Il protège contre la diffusion par inadvertance de ces variétés qui sont plus sensibles que les variétés antérieures
  • Non affecté par les conditions environnementales
  • Il peut être utilisé dans l'IPM
  • Il aide à la protection des ennemis naturels (prédateurs et parasites)

RAVAGEURS ET MALADIES DES CULTURES FLEURIÈRES ET VARIÉTÉS RÉSISTANTES

Maladies majeures

Tâche noire: Diplocarpon rosae

Oïdium: Sphaerotheca pannosa var. Rosae

Brûlure botrytique: Botrytis cinerea

Couronne gal: Agrobacterium tumefaciens

Autres maladies: chancre de la tige, tache des feuilles de Cercospora, rouille, etc.

Principaux ravageurs: Pucerons, tétranyque à deux points, cochenilles, thrips (fleur de Floride et fleur occidentale, thrips du piment), coléoptères et abeilles coupeuses de feuilles

Variétés de roses résistantes à Blackspot:

Visage d'ange, Mode Ivoire, Terre fière, Carrousel, Miss All-American Beauty, Reine Elizabeth, Duo Mister Lincoln, Razzel Dazzle, Electron, Montezuma, Rose Parade, Europeana, Pink Peace, Sonia, Première édition, Portrait, Tiffany, Premier prix , Pristine, Morden Ruby, Tropicana, Gene Boerner, Prominent, Morden Blush, Morden Snow Beauty, Parkland

Roses résistantes à la tache noire:

Arbuste: Care Free Spirit, Pink Knock Out, Rainbow Knock Out, Winter Sunset

Floribunda: Rainbow Sorbet, Julia Child

(Prima W. K. Hutabarat, 2012)

Roses résistantes aux taches noires et à la moisissure poudreuse: Variétés moyennement résistantes

Thé hybride: «Duo», «Tour Eiffel», «Grand Chelem», «Jamaïque», «Matterhorn»

Floribunda: «Golden Slipper», «Saratoga»

Grandiflora: «Camelot», «John S. Armstrong», «Pink Parfait», «Queen Elizabeth»

Rosiers arbustifs: «All That Jazz», «Carefree Wonder»

Résistant aux taches noires, à la moisissure poudreuse et aux taches foliaires de Cercospora variétés

Roses Rugosa: «Blanc Double de Coubert», «Fru Dagmar Hastrup» («Frau Dagmar Hartopp») «Rugosa Alba», «Topaz Jewel»

Roses résistantes aux taches foliaires de Cercospora

Jeepers Creeper, Ralph’s Creeper, Royal Bonica, Nearly Wild, Betty Prior, Sevillana, Magic Carpet, Easy Livin ’, Cherry Meidiland, Pearl Meidiland, Rosa mutabulis, Rosa wichuraiana, First Light, Bonica, Carefree Wonder, Sea Foam, Pink Grootendorst, Nozomi, Red Cascade, Mystic Meidiland, Hansa, Double Delight

Résistance aux acariens:

  • Grzeszkiewicz et Witaszek (1994) ont évalué 26 cultivars de roses pour le rendement et la qualité des fleurs coupées et pour la résistance aux T. urticae et ont signalé que les cultivars Parfait, Lady Rose et Hidalgo étaient les plus résistants à T. urticae.
  • Dhooria (1999) a étudié les dommages causés par les acariens sur 7 variétés de roses dans des conditions de polyhouse. Des dégâts d'acariens maximum ont été observés sur la variété Prophyta (53%) suivie de Sophire (23%), First Red (17%), Mercedes Long (15%) et Vivaldi (13%) et des dégâts d'acariens négligeables ont été observés dans les variétés Golden Time. »et« Pavarroti ».
  • Hole et Solunkhe (2005) ont examiné trente cultivars de roses pour leur résistance relative contre le tétranyque à deux points, T. urticae et a rapporté que le cultivar Rajhans a enregistré la plus faible population d'acariens, suivi d'Apsara et Rose Evening.
  • Tinike, Skyline, Conf Committee, Grand Gala et First Red
    (Dhananjaya Kumar K.S, 2007)
Résistance aux thrips:

  • Gahukar (2003) a étudié la réaction de trois variétés de roses contre les thrips au champ et a signalé que plus de 50% d'infestation avait été observée chez Gladiator, 40 à 42% d'infestation dans le folklore et 24 à 25% d'infestation à Landora en 1996 et 1997.
  • Skyline, Confetti, Tinike, Grand Gala, First Red (Dhananjaya Kumar K.S, 2007)

Maladies majeures

Flétrissement fusarien, pourriture des pieds, pourriture de la base, tache des feuilles et brûlure botrytique

Principaux ravageurs

Chenilles de thrips, d'acariens et de bourgeons

Variétés résistantes

  1. Onozaki et al., (1998) ont développé une lignée 91BO4-2 en croisant le type de pulvérisation cv. Super Gold avec Dianthus capitatus (sauvage). Cette lignée était très résistante à la flétrissure bactérienne.
  2. Ben et al., (1997) ont rapporté que cv. Arbel et Scarlette avaient une résistance nouvelle contre Fusarium se flétrir.
  3. Les cultivars William Sim et Vermillion Protruding étaient moins sensibles à la pourriture de la tige parmi les douze cultivars testés par Guba et al., 1997.
  4. cvs. Krassina, Regina, Fea, Naslada, ligne L-169 et ligne L-230 (Slavov et al., 2006)
  5. Arbel et Scarlette (Y. Ben-Yephet et al., 1997) CHRYSANTHÈMEMaladies majeures Flétrissement fusarien, rouille, pourriture des racines, oïdium, tache des feuilles et brûlure des fleurs. Principaux ravageurs Pucerons, chenille du bourgeon et thrips Variétés résistantes à la rouille: «Achievement», «Copper Bowl», «Escapade», «Helen Castle», «Mandalay», «Matador,« Miss Atlanta »,« Orange Bowl »,« Powder Puff ». GERBERAMaladies majeures Pied pourriture, flétrissure fusarienne, brûlure ou moisissure grise, oïdium et phyllody Principaux ravageurs Thrips et foreur des bourgeons Tableau 1. Variétés de Gerbera résistantes à la pourriture des pieds ( Phytophthora cryptogea)
HybrideCouleur des fleuronsCouleur du disqueRésistance de(Phytophthora cryptogea)Vase eau-de-viejournées
H 229/3crème avec ligne rosevertTrès résistant15.2
H 134/8jaunemarron foncéRésistant13.8
H 147/5rose clair avec une ligne rosemarron foncéRésistant12.7
Cantor Maria et Lenuta Chis, 2006

Tableau 2. Réaction des variétés de gerbera contre l'oïdium

Variétés Réaction à la maladie Nombre de fleurs / m2 / an Nombre de drageons / plante / an
Figaro Résistant 143.00 3.80
Marinila Résistant 106.60 4.00
Palmira Résistant 190.00 5.40
Cultivars de Gerbera résistants aux acariens

Sirtaki, Rondena, Fame et Bianca (Krips et al.,2001)

Maladies majeures

Flétrissement fusarien, CMV (virus de la mosaïque du concombre)

Principaux ravageurs

Thrips et chenille à pointes

Variétés de glaïeuls résistantes au flétrissement

  1. Novalux et cultivars résistants à la prospérité blanche (Dallavalle et al.,2002)
  1. Les cultivars Albana, Apricot Glow, Souvenir, Hoppman’s Glory, Sylvia, Dhiraj, White Friendship et White Prosperity seraient résistants tandis que Australia Four et Mansore sont tolérants au flétrissement (Mc Cullough, 1944 Georgia and Peikova, 1976 Sezginet al., 1983, Chandra et al., 1985 Bajaj et al., 1989).
  2. Chez les glaïeuls, sur 11 cv. Testés contre la maladie cvs «IARI Set 1», «Psittacinus Hylo et Sueliton se sont révélés résistants (Sharma et Bhattacharjee, 2002). Tableau 3 Variétés de glaïeuls résistantes au flétrissement
CultivarsParentLa résistance
Arka AmarPastèque Rose X AartiRésistant
Arka KesarVink’s Glory X SagarModérément résistant
DarshanPastèque Rose X ShirleyModérément résistant
DhirajBeauté spot X Psittacinus hybrideRésistant
Kum KumPastèque Rose X Lady JohnModérément résistant
CHINE ASTER

Maladies majeures

Pourriture du collet et pourriture des racines, Fusarium flétrissement, rouille, moisissure grise et jaunisse de l'aster (virus)

Principaux ravageurs

Foreur des tiges, acariens et nématodes

Fusarium variétés d'aster de Chine résistantes au flétrissement

«Heart of France», «Crego», «Ostrich», «Feather», «Stardust», «American Branching», «Roment», «Powderpuff» et «Lapplator» (Jones et Riker)

«Srdce Francie» et «Bukett Bila» (Kratka et Duskova, 1991)

Résistant: Matsumoto, Einf. Série Madeleine et Americka Kraska

Modérément résistant: Séries Chryzantemokvěte et Standy, Matsumoto Pink, Princes Armida et Jitka (Nečas et Kobza 2008).

Variétés résistantes aux nématodes (Meloidogyne incognita race 1):

Résistant: Shashank, AST-5, IIHR-17 et IIHR-21

Modérément résistant: Poornima (Nagesh et al.,1995)

Variétés d'aster de Chine résistantes à la rouille:

Aster de la Nouvelle-Angleterre (A. nova-angliae): «Crimson Beauty »,« Fanny’s »,« Harrington’s Pink »,« Honeysong Pink »,« Purple Dome »,« Wedding Lace ».

Aster des bois (A. dumosus): «Wood’s Blue».

Maladies majeures

Principaux ravageurs: Pucerons, thrips, foreur des bourgeons et nématode à galles

Variétés de tubéreuses résistantes

Nématode (Meloidogyne incognita) variétés résistantes:

Suvasini: moyennement résistant

Maladies majeures

Pourriture de la tige: Rhizoctonia solani

Brûlure des feuilles: Colletotrichum crossandrae

Tache alternarienne: Alternaria amaranthi var. crossandrae

Principaux ravageurs: Nématode à galles et pucerons

Maladies majeures

Principaux ravageurs: Nématode à galles, pucerons

Variétés de souci résistantes à la tache alternarienne:

«Golden Guardian» et «Doubloon».

Kumar, S., Tomar, K. S., et Shakywar, R.C., 2012, Réponse des variétés de gerbera contre la maladie de l'oïdium dans des conditions de polyhouse. Spectre de recherche HortFlora, 1 (3): 286-288.

Cantor Maria et Lenuta Chis, 2006, élevage de gerbera hybrida à la station de recherche fruitière de Cluj. Buletin USAMV, ISSN 1454-2382.

Grzeszkiewicz, W.H. et Witaszek, W., 1994, Évaluation de l'adéquation de 26 cultivars de roses cultivées pour les fleurs coupées dans un tunnel en plastique chauffé. Zeszyty Noukowe, Instytutu Sadownictwa i kwiaciarstwa w skienriewicach, 1: 85-94.

Dhooria, M. S., 1999, tétranyque à deux points, Tetranychus urticae, un ravageur sérieux des roses dans les polyhouses et son contrôle. J. Acarol., 14 (1 et 2): 84-87.

Gahukar, R. T., 2003, Facteurs influençant l'abondance et la distribution des thrips sur les fleurs de rose dans le centre de l'Inde. J. Entomol. Res., 27 (4): 271-279.

Hole, U. B. et Salunkhe, G. N., 2005, Études sur la résistance relative des cultivars de roses au tétranyque à deux points (Tetranychus urticae Koch.). J. Maharashtra Agril. Univ. 30 (3): 316-317.

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Krips OE, Willems PE, Gols R, Posthumus MA, Gort G, Dicke M., 2001, Comparaison de cultivars de culture ornementale Gerbera jamesonii sur la production de volatiles induits par les tétranyques, et leur attractivité pour le prédateur Phytoseiulus persimilis. J Chem Ecol. 27 (7): 1355-72.

Prima W. K. Hutabarat, 2012, Morris Arboretum Nursery Trial: A Study of Rose Care Treatment.

Onozaki, T., Ikeda, H., Yamaguchi, T., 1998. Effet de l'addition de nitrate de calcium à l'acide a-aminoisobutyrique (AIB) sur la prolongation de la vie en vase des fleurs d'oeillets coupés. J. Jpn. Soc. Hort. Sci. 67, 198 à 203.

Ben-Yephet, Y., M. Reuven et D. Shtienberg. 1997. Résistance complète des cultivars d'oeillets à la fusariose induite par Fusarium oxysporum f sp. dianthi race 2. Plant Dis. 81: 777-780


À propos de l'auteur / Informations supplémentaires:
Doctorant à l'Institut indien de recherche agricole, New Delhi

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APPLICATIONS

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Bactériophage pour le chancre des agrumes (Xanthomonas axonopodis var citri)

Taux recommandé: 1 qt / 100 gal


Feuille d'Ascochyta et tache de gousse

Ce qu'il faut chercher?
Pas une maladie très courante. La maladie est similaire à la brûlure à Mycosphaerella et à la pourriture des pieds à Ascochyta, plus courantes.


Photo: marin
Description de l'image
Ascochyta infection des pousses.

Photo: Evans
Description de l'image
Infection des semis.


Photo: Evans

Description de l'image
Ascochyta infection des gousses.


Stratégie de gestion
De nombreux cultivars de pois de grande culture résistent à A. pisi. Une rotation des cultures de 3 à 4 ans ainsi que des traitements fongicides foliaires permettront de lutter contre cette maladie et de nombreuses autres.


Conseils d'identification des maladies pour le dépistage avant la récolte

Les plants de canola qui mûrissent prématurément pourraient être malades. Clubroot continue de se répandre dans de nouvelles zones, c'est donc une cause possible - même dans les champs avec une variété résistante à la hernie. Lors du dépistage, vérifiez ces plantes évidentes ainsi que quelques zones aléatoires dans les parties les plus productives du champ.

Pourquoi scout maintenant? Les maladies sont généralement plus faciles à voir et à diagnostiquer dans les deux semaines précédant le moment de l'andainage. L'enquête sur les maladies après récolte peut être difficile car les symptômes de la maladie ont progressé et les plantes commencent à se décomposer. Alors rassemblez votre boîte à outils de dépistage (y compris les tondeuses et la truelle) et profitez de cette bonne situation de dépistage pour évaluer la gravité, puis utilisez les résultats du dépistage pour planifier les rotations, choisir les variétés et mettre à jour la prise de décision en matière de fongicide pour l'année prochaine.

Comment identifier les principales maladies à cette période de l'année

Pourriture sclérotique de la tige. Recherchez les zones avec des plantes logées ou prématurément mûries. Les plantes brunes ou blanchies dispersées dans votre culture verte peuvent indiquer une infection de faible niveau. La pourriture sclérotique de la tige est la plus dommageable lorsque l'infection de la tige est précoce, et sévère au point où les plantes entières meurent avant la maturation des graines. Examinez les zones inférieures à moyennes de la tige à la recherche de grandes lésions blanchies ou bronzées. Dans certains cas, une croissance fongique blanche peut même apparaître sur les tiges vertes. (Vous pouvez trouver l'infection très bas sur la tige, souvent là où les feuilles infectées tombent contre les tiges au niveau du sol.) Au fur et à mesure que la tige infectée sèche, elle apparaîtra blanchie ou brune - comme un os - et peut commencer à se fissurer ou à se déchirer. Le tissu de la tige infectée est souvent creux et dur, des corps de sclérotes noirs - d'apparence similaire aux excréments de souris - peuvent être trouvés à l'intérieur des tiges infectées. La sclérotinia peut être trouvée plus haut dans la canopée sur les branches latérales et les gousses, mais la perte de rendement pour ces sites d'infection est généralement minime par rapport aux infections des tiges inférieures. Voir le tableau en bas pour une bonne comparaison des maladies de la tige. En règle générale, les pertes de rendement dues à la pourriture de la tige par Sclerotinia seront à peu près équivalentes à 50 pour cent de l'incidence de la maladie. Par exemple, si 10 pour cent des tiges sont infectées, la perte de rendement sera d'environ la moitié - ou cinq pour cent. Des conditions humides jusqu'à la récolte peuvent provoquer la germination continue des sclérotes et l'émergence d'apothécies. Si cette libération de spores en fin de saison provoque des lésions sur les feuilles en décomposition, ces lésions se formeront trop tard pour entraîner une perte de rendement supplémentaire. Lire la suite.

Blackleg. Recherchez les zones avec des plantes logées ou prématurément mûries. Examinez les zones du bas au milieu de la tige pour des lésions. Des taches ressemblant à du poivre noir (pycnides) peuvent apparaître dans les lésions. Lorsque la jambe noire est suffisamment sévère pour entraîner une perte de rendement, la plante aura des chancres irréguliers, noueux et ligneux à la base de la tige. Cette infection finira par se développer à travers la tige, coupant le flux de nutriments. Si vous voyez des plantes se dessécher, arrachez les plantes et utilisez une tondeuse de jardin pour couper le haut de la racine, à environ un demi-pouce sous la base de la tige. Si plus de la moitié de la surface de la tige est noircie, la jambe noire a probablement réduit le rendement de cette plante. Comment évaluer une culture pour la jambe noire. Si les niveaux de jambe noire sont plus élevés que prévu, même avec un fongicide, vérifiez les notes pour voir le moment de l'utilisation du fongicide. Pour être efficace, un fongicide étiqueté pour la jambe noire doit être appliqué au stade 2 à 4 feuilles de la culture avec une dose et un volume d'eau appropriés. Si vous constatez une infection de la jambe noire, envisagez d'allonger la rotation de ce champ et de passer à un autre gène de résistance majeur (R) ou source de résistance.

Dans les semaines précédant la récolte, vous pouvez également trouver des lésions de la jambe noire à développement tardif plus élevées dans le canola. Recherchez des pycnides dans les lésions de la tige supérieure comme signe de jambe noire. Ceux-ci pourraient être causés par le pathogène moins virulent de la jambe noire L. biglobosa, qui a rarement assez de temps dans l'Ouest canadien pour causer une perte de rendement importante.

Clubroot. Les symptômes aériens, y compris le flétrissement et la maturation prématurée, devraient être évidents chez les plantes gravement infectées. Les plantes peuvent être infectées par la hernie même si les symptômes aériens ne sont pas présents. Il est important d'arracher ou de déterrer les plantes pour examiner les racines à la recherche de galles de la hernie. Lors de la recherche de la hernie, il est important d'examiner les racines des plantes à l'entrée du champ, les points bas ou les zones à maturation prématurée. Une infection légère ou grave présente essentiellement le même risque de propagation de la maladie avec du matériel. Si des galles sont présentes, marquez le patch et tirez les plantes autour des plantes infectées pour identifier toute la zone d'infection. La production de spores est incroyablement élevée à partir de chaque plante, alors considérez sérieusement la gestion des parcelles comme un moyen de ralentir cette maladie. Lire la suite. Les petites excroissances sur les racines peuvent ne pas être de type hippocampe, mais vous pouvez les faire analyser pour vous en assurer. «Gestion des patchs pour clubroot. Tu peux le faire. Voici comment.'

Même avec des galles aussi grosses, les plantes ne semblaient pas montrer de symptômes au-dessus du sol par rapport à elles-mêmes. Mais contre le reste du peloton, ils sont apparus «plus mûrs» et pas aussi verts. Crédit photo: Dane Froese Cette minuscule gale de la hernie n'aura aucun effet sur le rendement de la plante cette année, mais libèrera des spores pour une infection future.

Tache noire Alternaria. Ce n'est généralement pas un problème économique pour le canola B. napus (Argentine) lorsque la culture est sur pied, mais certaines infections superficielles peuvent faire noircir les andains à mesure que la culture sèche et meurt. Alternaria a tendance à être plus dommageable pour le canola juncea ou rapa (polonais). Dans ces cultures, de petites taches noires remonteront la plante, atteignant éventuellement les gousses. Si l'alternaria doit apparaître dans le canola napus, ce sera plus tard dans la saison, lorsque le temps et le temps auront enlevé le revêtement protecteur de cire sur la plante. Les rayons ultraviolets, les fluctuations froid / chaud et la grêle briseront cette barrière de cire. Un temps frais et humide peut également augmenter l'infection par l'alternariose, et les éclaboussures de pluie peuvent propager la maladie à d'autres plantes. Dans les cas d'infection à alternaria sévère (ce qui est rare), un andainage précoce peut avoir un avantage économique global pour un andainage ultérieur si l'alternaria s'est déplacée vers les gousses. Lorsque les zones infectées représentent 50% ou plus de la récolte, un andainage précoce peut être le meilleur moyen de récupérer le rendement de ces plantes infectées. La maladie peut continuer à se propager sur du matériel vert et l'andainage accélère le tarissement de la récolte. Lire la suite.

Aster jaunit. Les symptômes courants comprennent les gousses malformées en forme de vessie, qui produisent peu ou pas de rendement. La maladie peut également entraîner des gousses d'apparence normale qui ne contiennent que quelques graines déformées. D'autres symptômes incluent la germination dans la gousse et les plantes et gousses violacées, bien que ce pourpre puisse résulter de nombreuses causes potentielles. Lire la suite.

Aster jaunit avec une croissance en forme d'arbuste. Crédit photo: Barbara Ziesman

Tige grise. La tige grise, causée par Pseudocercosporella capsellae, peut être trouvée dans la plupart des champs de canola lorsque la culture mûrit, mais elle se développe généralement trop tard dans la saison de croissance pour affecter considérablement les rendements des cultures. Des taches argentées à violacées se développent sur la tige. Ceux-ci peuvent couvrir des tiges entières et continuer à se répandre dans les chaumes à mesure que les plantes se décomposent. La tige grise peut être confondue avec d'autres maladies qui provoquent des lésions de la tige et une décoloration de la tige, y compris la jambe noire, la pourriture sclérotique de la tige et le verticillium. Différencier la tige grise de la jambe noire: À la fin de la saison, coupez le haut de la racine à la base de la tige et recherchez des tissus noircis morts dans la couronne - une caractéristique de la jambe noire et non de la tige grise. Blackleg produira des points noirs proéminents. Différencier la tige grise de la pourriture sclérotique de la tige: Avec une tige grise, la tige reste forte au niveau de la lésion. La pourriture sclérotique de la tige, comme son nom l'indique, a une tige pulpeuse qui, lorsqu'elle sèche, se déchiquette facilement. Les tiges de Sclerotinia sont également de couleur plus claire - bien que cette distinction puisse être difficile à moins que vous n'ayez un échantillon des deux infections à comparer. Différencier la tige grise de la bande verticillienne: Le verticillium a un aspect enfoncé beige (et non gris) autour du moment de l'andain, mais commencera à devenir gris au moment de la récolte. Les tiges se déchiqueteront, révélant les microsclérotes minuscules et uniformes sous la couche infectée de l'épiderme de la tige (peau). La tige grise, si elle a des taches, sera à la surface et sera peu nombreuse et aléatoire. Lire la suite

Bande verticillienne. Nous l'incluons dans la liste, mais la bande de verticillium est plus facile à identifier juste au moment ou après la récolte. Les symptômes de la verticillie ne sont pas toujours visibles lors du dépistage de la maladie avant la récolte. Les symptômes peuvent ne montrer qu'un blanchissement de la tige d'un côté de la tige qui peut facilement être confondu avec la pourriture sclérotique de la tige. Les coupures de racines en coupe peuvent montrer une teinte grisâtre qui peut être confondue avec la jambe noire ou la tige grise. Un meilleur moment pour évaluer la rayure verticillienne est après la récolte, lorsque les microsclérotes de la tige se sont complètement développés. Une fois que la plante est complètement mûre, la tige pèle pour révéler de minuscules microsclérotes noirs qui ressemblent à du poivre moulu en apparence. Ces microsclérotes restent sur la tige de la plante ou tombent dans le sol. Bien que cela puisse sembler similaire au symptôme de la jambe noire, ces taches sont sous la paroi de la tige pour la bande verticillienne et toujours à la surface pour la jambe noire. Voir le tableau ci-dessous pour plus de conseils sur la façon de distinguer la rayure vertilicillienne de la jambe noire, de la pourriture sclérotique de la tige et de la tige grise. À noter que le laboratoire PSI de Winnipeg a un nouveau test pour le verticillium dans le canola. Les producteurs de canola du Manitoba peuvent obtenir des tests gratuits. Apprenez-en davantage sur le verticillium dans l'Encyclopédie du canola.

Bande verticillienne. Le pelage montre l'assombrissement sous l'épiderme et le cortex externe de la tige.

Pied pourriture et pourriture brune des racines annelantes. Les plants de canola présentant des symptômes superficiels bruns au niveau du sol ont probablement une pourriture fusarienne du pied, qui produit des lésions brun clair avec des marques concentriques. Une autre possibilité affectant les racines de canola au stade adulte est la pourriture brune des racines annelées (BGRR), qui est davantage un problème dans le canola polonais. Les symptômes du BGRR sont des lésions brun rouille sur la racine pivotante du canola, qui peuvent ceinturer et pincer la racine si elles sont graves. Ces maladies peuvent être beaucoup plus élevées dans les rotations serrées de canola. Lire la suite.

La pourriture brune des racines annelant à son plus grave pincera complètement les racines. L'usine se loge et meurt.

Flétrissement fusarien. Cela peut causer des tiges blanchies avec une légère teinte rosâtre typique du champignon fusarium. La décoloration peut se produire sur un seul côté d'une tige, un signe typique de flétrissement fusarien. Cette maladie a été pratiquement éliminée grâce à la résistance génétique.

Comparaison rapide de la pourriture de la tige de la jambe noire, de la hernie et de la sclérotinia

Maladies de la tige de canola - Une comparaison

Dans les champs, à la recherche de maladies aussi…

Vérifiez les gousses pour les trous de sortie des larves de charançon des gousses du chou. Si moins de 25 pour cent des cosses ont des trous de sortie, la pulvérisation pourrait être considérée comme un succès. Si moins de 25 pour cent ont des trous de sortie et que la récolte n'a pas été pulvérisée, c'était probablement la bonne décision. Si plus de 25 pour cent ont des trous de sortie et que la récolte n'a pas été pulvérisée, elle aurait probablement dû l'être.

Recherchez d'autres dommages causés par les insectes aux gousses. Gousses écorcées (indiquant la chenille légionnaire de Bertha ou l'alimentation des sauterelles), des trous plus grands dans les gousses (qui pourraient provenir de l'alimentation de la chenille des losanges, des sauterelles ou de la chenille légionnaire de Bertha) et des graines pourries brunes (qui peuvent résulter de la pénétration des lygus dans la gousse)

Vérifiez les pods manquants. Les insectes ne sont qu'une des raisons. La chaleur est une raison courante. Dix raisons pour lesquelles des pods sont manquants.

Évaluer la maturité des cultures. Ouvrez quelques cosses et évaluez le degré de changement de couleur. Cela peut aider à prendre des décisions concernant le moment de la récolte.

Recherchez les asticots des racines tout en déterrant les racines. Leur tunnelage peut réduire la fonction racinaire, des études en serre montrant un impact négatif sur le rendement. Quoi qu'il en soit, une mouche des racines sévère peut entraîner une perte de rendement, mais il existe des options limitées qui pourraient décourager le nombre de mouches des espèces de Delia qui produisent les larves de la mouche des racines. Les grandes plantes isolées ont tendance à encourager davantage la ponte et l'alimentation des larves que les tiges plus petites et plus nombreuses.


Voir la vidéo: Comment différencier une VENDANGE TARDIVE dune POURRITURE NOBLE Botrytis Cinerea LEçon 71